定 價:29.8 元
叢書名:高等醫(yī)藥院校基礎醫(yī)學實驗教學規(guī)劃教材
- 作者:彭吉林,郭陽主編
- 出版時間:2015/3/3
- ISBN:9787030434760
- 出 版 社:科學出版社
- 中圖法分類:R392-33
- 頁碼:140
- 紙張:膠版紙
- 版次:1
- 開本:16開
本《醫(yī)學免疫學實習指導》根據(jù)教育部《高等醫(yī)學院校系統(tǒng)解剖學教學大綱》的要求編寫,教材突出基礎理論、基本知識和基本技能。本實驗課程由以下板塊構成:基本實驗操作方法及常用器械、儀器使用占總內容的10%,基本實驗或經典驗證性實驗占總內容的70%,綜合設計性實驗占總內容的10%,研究創(chuàng)新性實驗占總內容的10%。每個實驗項目包括實驗的目的與要求、實驗標本與模型、實驗內容與方法、思考題等。其目的是指導學生根據(jù)實驗內容進行實驗操作,以便實驗師生課前做好準備。每個實驗項目后配有相應的思考題,便于學生復習,檢測學生對所學知識的掌握程度。思考題部分包括名詞解釋、選擇題、填空題和問答題四種常用題型,與課程結業(yè)考試題型一致,并附有參考答案。通過練習及解答幫助學生有效地回顧、復習和總結所學的知識,開闊思路,提高學生自主學習、提出問題、分析問題、解決問題以及臨床思維的能力。
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《醫(yī)學免疫學實驗》適用于醫(yī)學院校本科臨床、基礎等專業(yè)教學使用。9787030434760
目錄
第一章 動物實驗的基本操作 1
第一節(jié) 實驗動物的抓取同定 1
第二節(jié) 動物實驗注射給藥法 3
第三節(jié) 動物實驗的采血方法 5
第四節(jié) 實驗動物的處死方法 7
第二章 免疫學常用實驗儀器 9
第一節(jié) 酶標儀 9
第二節(jié) 流式細胞儀 10
第三節(jié) 酶聯(lián)斑點分析儀(ELISPOT分析儀) 11
第四節(jié) 低溫水平離心機 12
第五節(jié) 電泳儀 14
基本實驗
第三章 非特異性免疫實驗 16
第一節(jié) 溶菌酶的溶菌作用 16
第二節(jié) 補體參與的實驗 17
第三節(jié) 吞噬細胞的吞噬作用及吞噬殺菌功能測定 21
第四節(jié) NK細胞功能測定 25
第四章 免疫細胞的分離及功能檢測 29
第一節(jié) 免疫細胞的分離 29
第二節(jié) 細胞免疫功能的檢測 42
第三節(jié) 體液免疫功能的評價 49
第五章 經典抗原抗體反應 52
第一節(jié) 凝集反應 52
第二節(jié) 沉淀反應 59
第六章 免疫標記技術 69
第一節(jié) 免疫酶技術 69
第二節(jié) 免疫熒光技術 74
第三節(jié) 放射免疫測定技術 77
第四節(jié) 兔疫膠體金技術 78
第七章 細胞因子的檢測 82
第一節(jié) 細胞因子檢測方法概述 82
第二節(jié) 常見細胞因子的檢測 82
第八章 細胞凋亡的檢測 89
第一節(jié) 細胞凋亡的形態(tài)學研究方法 89
第二節(jié) 細胞凋亡的生物化學研究方法 93
第三節(jié) 流式細胞術檢測細胞凋亡的常用方法 98
綜合性實驗
第九章 抗體制備技術 104
第十章 免疫印跡 111
第十一章 免疫共沉淀 115
第十二章 免疫PCR技術 117
第十三章 HLA分型技術 120
第十四章 超敏反應動物模型 123
創(chuàng)新性實驗
第十五章 肺結核患者外周血中Th1/Th2細胞亞群的鑒定和分析 127
第十六章 血清中流感病毒中和抗體的檢測 129
附錄 常用試劑和溶液的配制 133
參考文獻 140
第一章 動物實驗的基本操作
動物實驗是免疫學實驗中的一種基本實驗技術。動物實驗的基本操作包括實驗動物的抓取固定、標記編號、注射給藥、取血及處死方法等。
第一節(jié) 實驗動物的抓取固定
實驗動物的抓取固定方法依實驗內容和動物的種類而定。正確的抓取固定動物,既可防止被動物咬傷,又不損害動物健康,有利于實驗順利完成。抓取固定動物前,要了解各種動物的一般習性。抓取固定時,要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確,同時要愛惜動物,使動物少受痛苦,不能粗暴恐嚇動物。
一、小鼠抓取固定
小鼠性情較溫順,一般不會咬人,比較容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴將其放在鼠籠蓋或其他粗糙表面上,在小鼠向前掙扎爬行時,用左手拇指和食指捏住其雙耳及頸部皮膚,將小鼠置于左手掌心,無名指和小指夾其背部皮膚和尾部,即可將小鼠完全固定(圖1-1)。在一些特殊的實驗中,如進行尾靜脈注射時,可使用特殊的固定裝置進行固定,如尾靜脈注射架或粗的玻璃試管。如要進行手術或心臟采血應先行麻醉再操作,如進行解剖實驗則必須先行無痛處死后再進行實驗。
二、大鼠的抓取固定
大鼠比小鼠牙尖性猛,可帶上帆布手套抓取,避免被咬傷。進行灌胃,腹腔、肌肉及皮下注射時,可采用左手固定法:用拇指和食指捏住鼠耳,余下三指緊捏鼠背皮膚,置于左掌心中,右手進行實驗操作;也可伸開左手之虎口,敏捷地從后面一把抓住(圖1-2)。做手術時,事先麻醉或處死,然后用細棉線繩活縛腿,背臥位綁在大鼠固定板上;尾靜脈注射時用大鼠固定盒固定即可。
三、豚鼠的抓取與固定
豚鼠膽小易驚,抓取必須穩(wěn)、準、迅速。一般先用手掌迅速扣住鼠背,抓住其肩胛上方,以拇指和食指環(huán)握頸部,另一只手托住臀部(圖1-3)。
另一種抓取方法是:把左手的食指和中指放在頸背部的兩側,拇指和無名指放在肋部,分別用手指夾住左右前肢,抓起來。然后翻轉左手,用右手的拇指和食指夾住右后肢,用中指和無名指夾住左后肢,使鼠體伸直成一條直線。不能抓豚鼠腰腹部,否則易造成肝破裂。固定的方式基本同大鼠。
四、兔的抓取固定
一般以右手抓住兔頸部的毛皮提起,左手托其臀部或腹部,讓其大部分體重集中在左手上(圖1-4),可避免動物的損傷。不能抓雙耳或抓提腹部。
家兔的固定一般分為盒式固定和臺式固定(圖1-5)。其中盒式固定適用于兔耳采血、耳血管注射等情況;臺式固定適用于手術時:動物仰臥,四肢用粗棉繩活結綁住,拉直四肢,將繩綁在兔臺四周的固定棒上,頭以固定夾固定或用一根粗棉繩挑過兔門齒綁在兔臺鐵 柱上。
圖1-5 家兔的盒式固定與臺式固定
第二節(jié) 動物實驗注射給藥法
一、腹 腔 注 射
腹腔注射部位為下腹部腹中線左右兩側1cm處,為避免傷及內臟,抓取固定動物時應使頭稍向后低,使內臟移向上腹(圖1-6)。局部消毒后,右手持注射器將針頭刺入皮膚,針頭到達皮下后,稍向前推,再以45°刺入腹腔,回抽無回血或液體方可注入藥液。腹腔注射通常均選取5號針頭。大鼠、小鼠、豚鼠腹腔注射時一般以左手固定動物,右手注射;對體重較大的大鼠或豚鼠、家兔等大動物,可由助手固定動物,暴露腹部,另一人進行注射操作。
二、皮 下 注 射
一般選擇皮下組織較疏松的部位注射。大鼠、小鼠、家兔、犬等注射部位有頸背、腋下、側腹和后肢,豬為耳根部皮下,雞為翼下部位。局部消毒,注射者將皮膚提起,將注射針頭刺入皺褶底部,沿體軸推進5~10mm,若針尖易左右擺動,表明已刺入皮下,回抽無回流物即可注射,皮下呈擴散狀隆起。注射完畢,干棉球局部壓迫,防注液外漏。小鼠用4號針頭,家兔等用6號針頭。
三、皮 內 注 射
大鼠、小鼠、豚鼠、家兔等動物皮內注射常選擇背部脊柱兩側的皮膚。豬選取耳殼外面或腹側皮膚注射。局部去毛、消毒,用左手將皮膚捏成皺襞,右手持針,將針頭與皮膚約成30°角刺入皮下,使針頭向上挑起并稍刺入,即可注射(圖1-7),注射部位鼓起一小丘。
四、肌 內 注 射
大鼠、小鼠、家兔、犬等一般選擇肌肉豐滿而無大血管通過的臀部、大腿內外側肌內注射。局部消毒,使注射針與肌肉約成60°角,迅速刺入肌肉,回抽無回血方可進行注射(圖1-8)。大鼠和小鼠選用5號針頭,家兔、貓、犬選用6號針頭。
五、靜 脈 注 射
1. 大鼠、小鼠尾靜脈注射 大鼠、小鼠尾部有四根血管,其中腹側的一根為動脈,背部的一根為靜脈,兩側各有一根靜脈。兩側靜脈較易固定,用來靜脈注射。先固定,暴露尾部,使血管擴張,用左手無名指從下面托起尾巴,以拇指和小拇指夾住尾巴的末梢,右手持4號注射針,從尾末端沿與靜脈平行方向進針,針頭刺入后輕推藥液,若無阻力,表示針頭已在靜脈中,可繼續(xù)緩緩推入藥液;若輕推藥液后阻力較大,且有白色隆起,說明注射到皮下,需拔出針重新刺入。注射完畢用干棉球按壓止血或把尾巴向注射側彎曲以止血(圖1-9)。
2. 豚鼠背中足靜脈注射 固定動物,找到靜脈,局部剪毛,消毒(為方便注射甚至可剪破皮膚),右手持4號注射針沿向心方向刺入血管,回抽有回血即可注射,注射后干棉球壓迫止血,膠布包裹傷口。
也可耳緣靜脈注射。耳緣靜脈較細注射難度大,固定很重要。操作者先使靜脈充盈,用左手食指和中指夾住靜脈近心端,拇指和小指夾住耳邊緣部分,無名指和小指在耳下作墊,右手持4號注射針從靜脈末端順血管平行方向刺入,回抽如有回血,放松對耳根部血管的壓迫,固定針頭緩慢注入藥液。
3. 家兔耳緣靜脈注射 將兔盒式固定,找到耳緣靜脈,拔去局部被毛,酒精擦拭使血管充盈。注射、止血方法與豚鼠基本相同。若注射成功,注射器針栓可輕松推動,可見藥液在血管內流動(圖1-10)。
圖1-9 小鼠尾靜脈注射 圖1-10 家兔耳緣靜脈注射
第三節(jié) 動物實驗的采血方法
一、小鼠和大鼠的采血方法
1. 割(剪)尾采血 固定,尾部用45~50℃的溫水或酒精擦拭,使尾靜脈充盈擴張。消毒,割去尾尖1~2mm (小鼠)或3~5mm(大鼠),讓血液自由滴入試管或用血紅蛋白吸管吸取(圖1-11)。采血結束,傷口消毒,棉球壓迫止血;蛟谖膊孔鲆粰M切口,割破尾動脈或靜脈收集血液。取血量少,小鼠0.1mL/次,大鼠0.3~0.5mL/次。每只鼠可采血10次 以上。
2. 尾靜脈穿刺采血 固定,充盈尾靜脈,消毒,注射針沿與靜脈平行方向,從尾末端進針穿刺,抽取血液。
3. 眼眶后靜脈叢采血 將取血管浸入1%肝素,干燥后使用。操作者一手固定動物,拇指和食指盡量將鼠頭部皮膚捏緊,或輕輕壓迫頸部兩側,使鼠眼球突出,眶后靜脈叢充血,另一只手持取血管,以45°角從內眼角刺入,深度為小鼠2~3mm,大鼠4~5mm。當感到有阻力時即停止推進,將針退出0.1~0.5mm,邊退邊抽。采血后,去頸部壓力,拔出采血管。可短期內重復采血,采血量小鼠為0.2~0.3mL/次,大鼠0.5~1.0mL/次。
4. 摘眼球法 左手固定動物,壓迫眼球,盡量使眼球突出,右手用鑷子或止血鉗在眼球根部迅速摘除眼球,眼眶內很快流出血液(圖1-12)。
圖1-12 小鼠摘眼球取血
5. 斷頭采血 采血者左手的拇指和食指從背部握住鼠的頸部皮膚,用剪刀迅速剪掉頭部,立即將頭朝下,提起動物,血液即流入試管中。采血量小鼠為0.8~1.2mL,大鼠5~10mL。
6. 頸(股)動靜脈采血 將鼠麻醉,剪去一側頸部外側被毛,做頸動靜脈分離手術,用注射器采血即可。
二、豚鼠采血法
1. 耳緣剪口采血 使耳充血,消毒,用銳器割破耳緣,切口邊緣涂抹20%枸櫞酸鈉,阻止血凝,血自切口自動流出進入盛器。每次采血約0.5mL。
2. 心臟采血 可由助手握住前后肢進行采血。選心臟搏動最強部位進針穿刺,血液即流入針管。針頭宜細長,以免術后穿刺孔出血。
3. 股動脈采血 固定,剪去腹股溝被毛,局部麻醉,切開長2~3cm的皮膚,鈍性分離軟組織,暴露并游離出1~2cm的股動脈。用鑷子提起股動脈,遠心端結扎,近心端用止血鉗夾住,在動脈壁中央剪一小孔,插入采血細管,放開止血鉗,血液即可流出。一次可采血10~20mL。
4. 背中足靜脈取血 助手固定動物,伸直膝關節(jié)。術者消毒腳背面,以左手拇指和食指拉住豚鼠的趾端,右手持注射針刺入靜脈取血,完畢后用棉球壓迫止血。
三、兔 采 血 法
1. 耳緣靜脈采血 固定,局部去毛,用手指摩擦兔耳,使靜脈擴張,消毒,在耳緣靜脈末端刺破血管待血液漏出取血,或將針頭逆血流方向刺入耳緣靜脈取血,完畢,用棉球壓迫止血,一次最多采血5~10mL,可反復取血。
2. 兔耳中央動脈采血 兔耳中央較粗、顏色鮮紅的為中央動脈。先使兔耳充血,左手固定兔耳,右手持6號針頭注射器從動脈末端沿與血管平行地向心方向刺入,即可見動脈血進入針筒,取血完畢后注意止血。一次約采血15mL。
3. 心臟取血 固定,剪去左胸部兔毛,消毒。在胸骨左緣第3、4肋骨間心尖搏動最強處垂直刺入心臟,血液可自動泵入注射器。若針頭已進入心臟但抽不出血時,可以前后進退調節(jié)針頭的位置,切不可使針頭在胸腔內左右擺動以防止傷及心、肺。一次可取血20~25mL,6~7天后可重復采血。也可用50mL注射器(16號針頭)心臟一次抽血致死。
4. 后肢脛部皮下靜脈取血 固定,拔去脛部被毛,在脛部上端股部扎橡皮管,在脛部外側淺表皮下可見到皮下靜脈。用左手拇指、食指固定好血管,右手持注射器(5號針頭)與靜脈平行進針,抽血有回血即可采血。采血完畢后用棉球壓迫止血,此處不易止血,壓迫時間應稍長。一次可采血2~5mL。
5. 大血管采血
(1) 頸外靜脈采血:將兔臺式固定,充分暴露頸部。用左手朝心端繃緊頸部皮膚,右手持注射器沿頸部平行方向朝頭端方向刺入,有回血后,固定好注射器,緩慢采血。一次可取血10mL以上。取血完畢,用干紗布壓迫止血。
(2) 股動脈、股靜脈采血:固定后,左手捫股三角區(qū),觸及動脈搏動部位,盡量由遠心端進針,向近心端方向穿刺,刺中可見血液流入針筒。如采靜脈血,在捫到動脈搏動的部位進針后,當針頭觸及索狀感股動脈時,將針頭稍朝內側移動,再迅速穿刺,即可穿刺到股靜脈。采血完畢,用棉球壓迫止血。